SpuFz1基因編輯平臺的工程化與應用。 院方供圖

近日，復旦大學附屬眼耳鼻喉科醫(yī)院黃錦海/周行濤教授團隊在國際學術期刊《細胞》（Cell）子刊《分子細胞》（Molecular Cell）發(fā)表“Engineered hypercompact Fanzor-ωRNA system with enhanced genome editing activity”（增強基因編輯活性的工程化超緊湊Fanzor-ωRNA系統(tǒng)）。

10月11日，澎湃新聞記者從復旦大學附屬眼耳鼻喉科醫(yī)院獲悉，上述研究以真核來源、體積極小的“迷你剪刀”為核心，通過蛋白與ωRNA協(xié)同工程化改造，在哺乳動物細胞中編輯效率成倍提升；在眼部，首創(chuàng)在不產生雙鏈斷裂情況下搭建A→G/C→T雙向堿基編輯平臺，單AAV一針遞送即可獲得清晰在體編輯信號。

Cas9/Cas12因體積大難被單AAV裝載。Fanzor作為真核生物中的RNA引導DNA內切酶，因尺寸小，被視為突破體內遞送瓶頸的潛在“利器”，但其長期受困于哺乳動物細胞內的編輯活性與穩(wěn)定性不足。

為攻克這一痛點，研究團隊采用“蛋白—ωRNA雙輪驅動”策略：對RuvC等關鍵酶活性結構域進行組合優(yōu)化，重構ωRNA骨架莖環(huán)與配對區(qū)，實現蛋白與RNA改造的協(xié)同增效，大幅提升整體活性。系統(tǒng)評估表明，SpuFz1 V4在多個人類內源位點編輯效率顯著提升，展現出真核來源RNA引導核酸酶中罕見的高活性與良好兼容性。

新系統(tǒng)體內遞送表現出色，用AAV單載體導入小鼠視網膜，在Ai9報告小鼠模型中觀察到清晰熒光信號，在內源位點檢測到穩(wěn)定編輯信號，驗證其在眼部及復雜神經組織中的有效性與可操作性。超緊湊編輯工具與小體積載體高度契合，推動“單AAV精準體內編輯”走向現實。

周行濤教授表示，基因編輯邁向在體應用階段，新一代超緊湊編輯系統(tǒng)深度融合分子工程與遞送策略，顯著提升可達性與可拓展性，加速基礎研究向臨床轉化進程。針對角膜新生血管疾病、遺傳性視網膜變性等重大眼病，該創(chuàng)新技術為未來“一針式”精準干預提供助力，帶來更可靠、可復制且高效的治療，應用前景廣闊。